Communication scientifique
Séance du 27 avril 2004

Conséquences tissulaires de l’activation du système rénine-angiotensine

MOTS-CLÉS : anévrysme.. angiotensine ii. leucocyte. récepteur de l’angiotensine de type 1
Tissue consequence of renin-angiotensin system activation
KEY-WORDS : aneurysm.. angiotensin ii. leukocytes. receptor, angiotensin, type i

Jean-Baptiste Michel *

Résumé

Le système rénine-angiotensine (SRA), l’un des système de régulation de la pression sanguine, est distribué entre le sang circulant et l’espace péricellulaire de l’interstium tissulaire. Il participe en physiologie et en pathologie du remodelage tissulaire dans le système cardiovasculaire. Dans le cadre de ses effets sur le remodelage vasculaire, le système rénine-angiotensine tissulaire agit sur les cellules musculaires lisses vasculaires et les fibroblastes, tandis que le système rénine-angiotensine plasmatique a pour cibles les cellules endothéliales et les leucocytes circulants. L’angiotensine II, peptide actif du système, déclenche différentes voies de signalisation aboutissant à une réponse fonctionnelle immé- diate (hypertension artérielle), puis à une réponse structurale hypertrophiante et, enfin, à des réponses pro-inflammatoires et procoagulantes. Dans un modèle expérimental d’athé- rosclérose, la perfusion d’angiotensine II induit la formation d’anévrismes, qui a été reliée à l’activation des leucocytes circulants. Des antagonistes de l’angiotensine II ont, dans ce type de modèle, un effet bénéfique sur le ralentissement de la formation des lésions d’athérosclé- rose.

Summary

The renin-angiotensin system (RAS) is compartmented between the circulating blood and pericellular spaces. Whereas renin and its substrate diffuse easily from one compartment to another, angiotensin peptides act in the compartment where there are generated. Renin is trapped in tissues by low- and high-affinity receptors. In target cells, angiotensin II/AT1 receptor interaction generates various signals, including an immediate functional calciumdependent response, secondary hypertrophy, and a late proinflammatory and procoagulant response. These late pathological effects are mediated by NADPH oxidase-generated oxygen free radicals and NF-k-B activation. In vivo, renin tissue binding and convertingenzyme induction are the main determinants of RAS involvement in vascular remodeling. The main target cells of interstitial angiotensin II are vascular smooth muscle cells and fibroblasts, whereas endothelial cells and circulating leukocytes are the main targets of circulating angiotensin II. In vivo, angiotensin II participates in the vascular wall hypertrophy associated with hypertension. In diabetes, as in other localized fibrotic cardiovascular diseases, the tissular effects of angiotensin II are mainly dependent on its ability to induce TGFβ expression. In experimental atherosclerosis, angiotensin II infusion induces aneurysm formation mediated by activation of circulating leucocytes. Angiotensin II antagonist therapy has beneficial effects on pathological remodeling in animal models, but it remains to be determined whether this is also the case in humans.

INTRODUCTION

Le système rénine-angiotensine consiste en une cascade d’interactions biochimiques aboutissant à la production de l’angiotensine II, un peptide de 8 acides aminés qui interagit avec ses cellules cibles via des récepteurs à 7 domaines transmembranaires couplés à des phospholipases par l’intermédiaire de protéines G. Nous nous inté- resserons ici aux cibles directes de la rénine et de l’angiotensine II dans le système vasculaire. Une autre action importante de l’angiotensine II est de stimuler la sécrétion d’aldostérone par la corticosurrénale, mais les effets de l’aldostérone sur le remodelage vasculaire ne seront pas abordés ici.

COMPARTIMENTATION DE LA MEDIATION EXTRACELLULAIRE DE L’ANGIOTENSINE II.

Le système rénine-angiotensine a été décrit comme un système endocrine par Goldblatt en 1934 [1]. La rénine active est synthétisée et stockée par les cellules myoépithélioïdes de l’artériole afférente au glomérule rénal. Sa sécrétion est contrô- lée par divers stimuli diminuant la concentration de calcium libre dans la cellule myoépithélioïde : stimulation β-adrénergique, baisse de la tension pariétale dans l’artériole et diminution de la réabsorption du sodium dans la macula densa.

Inversement, l’augmentation du sodium dans la macula densa, de même que l’angiotensine II elle-même, freinent la sécrétion de rénine en augmentant le taux de calcium libre dans les cellules myoépithélioïdes.

La rénine active sécrétée diffuse dans les compartiments plasmatique, lymphatique et interstitiel, de même que son substrat, l’angiotensinogène, synthétisé et sécrété par le foie. A l’opposé, les peptides dérivés de l’angiotensinogène (angiotensines I et II) n’agissent vraisemblablement que dans le compartiment dans lesquels ils sont générés. Un point important est que la rénine active, si elle diffuse librement dans le
plasma, s’adsorbe dans les tissus, en particulier dans la paroi artérielle. Dans le compartiment interstitiel, les résidus mannose-6 phosphate retiennent la rénine par des liaisons électrostatiques de basse affinité [2], cette liaison conduisant à un enrichissement en rénine et en angiotensine du milieu interstitiel en comparaison du plasma [3]. Un récepteur membranaire de haute affinité pour la prorénine et la rénine active [4] a par ailleurs récemment été mis en évidence, dont l’implication physiologique et en pathologie est encore à préciser.

On peut donc différencier l’interaction rénine-angiotensinogène dans le plasma, à l’origine de la production d’angiotensine I, rapidement convertie en angiotensine II par l’enzyme de conversion abondamment présente dans le plasma et l’endothé- lium, et l’interaction péricellulaire rénine-angiotensinogène, tous deux adsorbés dans les tissus où l’expression du récepteur à la rénine et l’expression non constitutive de l’enzyme de conversion sont limitantes de la production d’angiotensine II [5].

Finalement dans ce contexte, l’enzyme de conversion non-endothélial pourrait avoir un rôle limitant.

SIGNAUX INTRACELLULAIRES INDUITS

L’angiotensine II agit sur ses cellules cibles par l’intermédiaire de récepteurs à 7 domaines transmembranaires dont il existe deux types, AT1 et AT2. Ce dernier est surtout impliqué dans l’embryogenèse, et son rôle dans le remodelage vasculaire ne sera pas abordé ici (pour revue, voir [6]). Le récepteur AT1 est présent sur les monocytes, les polymorphonucléaires, les cellules endothéliales, les cellules musculaires lisses et les fibroblastes. Dans ces cellules, le récepteur AT1 est couplé aux phospholipases C, D et A2.

Schématiquement, on peut d’abord identifier la signalisation fonctionnelle immé- diate, en réponse à l’interaction entre l’angiotensine II et son récepteur AT1, par l’intermédiaire de l’activation de la phospholipase C, de la libération de phosphoinositides, de la mobilisation du calcium et, pour partie, de l’activation de la protéine kinase C. Cette réponse fonctionnelle est responsable des effets vasomoteurs de l’angiotensine II via la cellule musculaire lisse artérielle, et de la libération immédiate de monoxyde d’azote par l’endothélium [7].

Dans un second temps, la protéine kinase C, activée par le diacylglycérol (issu de la déphosphorylation de l’acide phosphatique produit par la phospholipase D), agit sur la régulation de l’expression génique, via le complexe AP-1, de c-jun, de c-fos et des MAP ( mitogen-activated protein )-kinases [8]. Cette activation aboutit à une augmentation globale de la synthèse protéique, en particulier des facteurs de croissance FGF ( fibroblaste growth factor ) et TGF-β [9], de protéines nucléaires, de protéines de la matrice extracellulaire et de protéines sécrétées comme les antiprotéases (PAI-1, plasminogen-activator inhibitor ). Ce sont ces mécanismes qui sont impliqués dans les effets hypertrophiants de l’angiotensine II et dans la facilitation d’entrée en mitose qu’elle induit.

Le troisième niveau d’activation emprunte la voie de la phospholipase A , qui 2 s’accompagne de la libération d’eicosanoïdes et de la production d’un stress oxydatif dans les cellules cibles. La voie des eicosanoïdes (impliquant un substrat, l’acide arachidonique, et des enzymes, cyclooxygénases et lipoxygénases, prostaglandineset thromboxanes-synthétases) aboutit à la production de prostaglandines qui ont un un effet vasodilatateur et antiagrégant. Cette voie assure aussi la synthèse du thromboxane A , de leucotriènes ou du PAF ( platelet-activating factor )-acéther, 2 facteurs vasoconstricteurs et proagrégants, capables de surcroît d’augmenter la perméabilité endothéliale.

L’augmentation du stress oxydatif induit par l’angiotensine II dans ses cellules cibles est également principalement liée à l’activation de la phospholipase A [10], 2 associée à la NADPH oxydase membranaire productrice d’ions superoxyde [11].

Une interaction avec les éléments mitochondriaux producteurs de formes réactives de l’oxygène n’est par ailleurs pas exclue. L’augmentation du stress oxydatif dans la cellule provoque l’activation du système NF ( nuclear factor )-k-B qui, transloqué au noyau, induit la transcription de gènes codant pour des facteurs pro-inflammatoires (IL (interleukine)-6, VCAM ( vascular cell-adhesion molecule …) [12] et procoagulants (facteur tissulaire) [13].

Dans le contexte du remodelage vasculaire, les cibles de l’angiotensine II sont les leucocytes circulants et les cellules endothéliales (pour l’angiotensine II plasmatique), et les cellules musculaires lisses et les fibroblastes adventitiels de la paroi artérielle (pour l’angiotensine II interstitielle). Si les cascades biochimiques de signalisation sont communes à ces différents types cellulaires, la réponse finale dépend de la physiologie propre à chaque type cellulaire : augmentation de la perméabilité et synthèse de molécules d’adhésion pour les cellules endothéliales [14], hypertrophie et sécrétion de cytokines pro-inflammatoires pour les cellules musculaires lisses, production de TGF-β et de collagène pour les fibroblastes, activation des leucocytes.

Toutes ces données, essentiellement obtenues in vitro , ne tiennent généralement pas compte des contre-régulations physiologiques existant in vivo (en particulier de celle assurée par le monoxyde d’azote endothélial, produit in vivo en réponse au cisaillement endothélial), ni des modifications phénotypiques des cellules (phénotype sécrétoire pour les cellules musculaires lisses, par exemple). Toutefois, elle sont probablement représentatives d’un certain nombre de phénomènes chroniques observés in vivo , en pathologie, lorsque les cellules vasculaires sont activées par les conditions environnementales.

GENESE D’ANGIOTENSINE II ET REMODELAGE TISSULAIRE.

L’activation du système rénine-angiotensine in vivo peut être étudiée de deux façons : soit en analysant les effets de l’activation du système sur la structure vasculaire (dans des cas d’hypertension rénovasculaire expérimentale ou chez des
animaux transgéniques surexprimant la rénine), soit en étudiant les conséquences de l’inhibition de l’angiotensine II dans des modèles ne dépendant pas directement de l’activation du système rénine-angiotensine. Dans tous les cas, il est toujours difficile de séparer complètement la réponse fonctionnelle sur la pression artérielle de la réponse structurale sur la paroi des vaisseaux.

Classiquement, la production d’angiotensine II conduit à une hypertension arté- rielle et à une hypertrophie de la paroi artérielle. Cette dernière s’accompagne d’une augmentation de la synthèse de matrice extracellulaire [15] et de la sécrétion plasmatiques d’antiprotéases telles que PAI-1 et TIMP ( tissue inhibitor of metalloproteinases ) [16]. L’hypertension, en augmentant la tenségrité (tension interne régulée par la conformation du cytosquelette) des cellules musculaires lisses liée à leur adhésion à la matrice extracellulaire, s’ajoute ici aux effets directs de l’angiotensine II sur la trophicité des cellules vasculaires. En revanche, lorsque l’hypertension artérielle n’est pas directement liée à l’activation du système rénineangiotensine, comme chez le rat spontanément hypertendu ou dans le modèle d’intoxication à la nitroarginine (suppression de la production endothéliale de monoxyde d’azote, NO, au potentiel vasodilatateur), le blocage du système rénineangiotensine entraîne une baisse importante de la pression artérielle et de la trophicité de la paroi artérielle [17].

Angiotensine II et fibrose

Au-delà de l’hypertrophie vasculaire, l’angiotensine II est un facteur profibrosant capable d’activer directement, comme indirectement, les fibroblastes interstitiels [18]. Directement, l’angiotensine II augmente l’activité de synthèse de matrice extracellulaire par les fibroblastes en culture tandis que, indirectement, elle facilite l’accumulation périvasculaire de cellules inflammatoires productrices de TGF-β, limitant le phénomène inflammatoire et activant la fibrose.

Les interactions entre système rénine-angiotensine et complications vasculaires du diabète sont un autre exemple de l’implication de TGF-β Les inhibiteurs de l’enzyme de conversion et les antagonistes de l’angiotensine II [19, 20] ont un effet protecteur vis-à-vis des complications vasculaires du diabète, entre autres via une diminution de l’expression du TGF-β. De même, le déterminisme génétique d’expression de l’enzyme de conversion est un des facteurs reconnus de susceptibilité aux complications vasculaires du diabète [21]. Le diabète et l’angiotensine II ont des effets additifs sur l’expression du TGF-β, ce dernier consituant un médiateur de choix entre ces deux facteurs et le remodelage vasculaire pathologique. Nous avons récemment montré une relation entre l’expression tissulaire de l’enzyme de conversion génétiquement déterminée et induite par le diabète et celle du TGF-β dans les artérioles rénales [22].

Un autre exemple de la relation entre activation du système rénine-angiotensine et fibrose cardiovasculaire est celui des valves cardiaques et de la cicatrice fibreuse postinfarctus. En physiologie, les myofibroblastes des valves, activés par la
contrainte mécanique de chaque battement cardiaque, expriment fortement l’enzyme de conversion [23]. Il a récemment été montré que cette expression est augmentée dans les valves pathologiques, en association avec les dépôts de LDL ( low density lipoprotein )-apo B [24], ainsi que dans les lésions d’athérosclérose ; dans le plasma, l’enzyme de conversion est également associée avec la fraction LDL. Dans le même ordre d’idées, la cicatrice fibreuse postinfarctus, hémodynamiquement contrainte, exprime l’enzyme de conversion [25, 26], et les antagonistes de l’angiotensine II diminuent l’expression de TGF-β dans la cicatrice [27].

De façon analogue, les inhibiteurs du système rénine-angiotensine diminuent la prolifération intimale des cellules musculaires lisses secondaire à une angioplastie.

Par ailleurs, le polymorphisme d’expression de l’enzyme de conversion influence le taux de resténose après angioplastie chez l’animal [28] et chez l’homme [29]. Ces effets sont essentiellement dus à l’angiotensine II interstitielle, produite localement, au niveau des cellules musculaires lisses ou des fibroblastes, à partir de la rénine et de l’angiotensinogène adsorbés dans les tissus. Le rôle dans ce contexte du récepteur de la rénine récemment mis en évidence reste à préciser.

L’angiotensine II du compartiment plasmatique interagit avec les cellules endothé- liales et les leucocytes circulants. L’interaction entre l’angiotensine II et l’endothé- lium peut induire une première réponse fonctionnelle de libération de monoxyde d’azote via les récepteurs AT1 [7] diminuant transitoirement la pression artérielle.

Les principaux effets chroniques de l’interaction de l’angiotensine II sur l’endothé- lium, en particulier dans des contextes de faible production de NO (endothélium peu stimulé par le cisaillement hémodynamique, déficit d’activité de la NO synthé- tase en rapport avec l’athérome), sont assurés par l’activation de la phospholipase A et du stress oxydatif intracellulaire. L’angiotensine II induit alors la production 2 d’eicosanoïdes et un phénotype pro-inflammatoire de la cellule endothéliale.

Angiotensine II, inflammation et athérosclérose

L’angiotensine II circulante peut interférer avec les éléments figurés du sang, en particulier avec les monocytes-macrophages. L’angiotensine II active les monocytes, mais également les polymorphonucléaires neutrophiles, via leur récepteurs AT-1 [30]. L’angiotensine II induit une dégranulation partielle des polymorphonucléaires neutrophiles, ainsi que la production d’anion superoxyde et la sécrétion de leucotriènes.

Un exemple de cet effet sur les leucocytes a été apporté par une étude menée chez des souris invalidées pour le gène de l’apolipoprotéine E (Apo E-/-), donc susceptibles à l’athérosclérose : la perfusion directe d’angiotensine II n’induit qu’une augmentation très limitée de la pression artérielle, mais provoque la formation d’anévrismes de l’aorte [31]. Ces derniers sont associés à une disparition des cellules musculaires lisses artérielles, à une destruction de la matrice extracellulaire et à une infiltration importante de cellules inflammatoires productrices de protéases (activateurs du
plasminogène, métalloprotéinases) [32]. Si ces résultats semblent paradoxaux quand l’on sait les conséquences de l’activation du système rénine-angiotensine interstitiel sur l’hypertrophie de la paroi artérielle et sur l’augmentation de la sécrétion d’antiprotéases par les cellules musculaires lisses, ils s’expliquent par un effet préférentiel de l’angiotensine II circulante sur les leucocytes. Une greffe de moelle osseuse provenant de souris invalidées pour le récepteur AT1 de l’angiotensine II (souris AT1-/-) prévient la formation de ces anévrismes [33].

A l’inverse, les inhibiteurs du système rénine-angiotensine freinent le développement de l’athérosclérose chez les souris apo E-/- et les lapins hypercholestérolémiques. Il a été montré que l’irbesartan, un antagoniste du récepteur AT1 de l’angiotensine II, diminue les lésions d’athérosclérose chez la souris Apo E -/- en diminuant le phénotype inflammatoire de la plaque [34].

CONCLUSIONS

Le mode d’action du système rénine-angiotensine sur le remodelage vasculaire est complexe d’un point de vue biologique, dépendant de plusieurs facteurs parmi lesquels les plus importants sont probablement la nature du compartiment dans lequel l’angiotensine Il est produite et l’état de réceptivité des cellules cibles. Cette action sur le remodelage dépend de la capacité du tissu pathologique à fixer la rénine et à exprimer l’enzyme de conversion in situ .

Les inhibiteurs du système rénine-angiotensine sont apparus il y a plus de vingt ans avec les inhibiteurs de l’enzyme de conversion de l’angiotensine ; les antagonistes de l’angiotensine II sont quant à eux plus récents. Au-delà de leurs effets fonctionnels immédiats sur la pression artérielle, les inhibiteurs du système, qui ont une bonne biodisponibilité par rapport à leurs cibles circulantes et tissulaires, sont efficaces à prévenir les effets de l’angiotensine II sur le remodelage vasculaire. Cependant, aucune de ces deux classes moléculaires n’est complètement spécifique, ni complè- tement inhibitrice aux doses employées en clinique. Leur association a un effet additif sur la qualité d’inhibition du système en agissant à des niveaux différents de la cascade biochimique du système [35]. Il est également probable que la biodisponibilité des molécules de ces deux classes, dans le compartiment interstitiel et le compartiment circulant, sont assez différents. Dans ce contexte, s’il est intéressant de tester leur additivité sur l’hypertension artérielle, ce le sera encore plus sur le remodelage vasculaire.

BIBLIOGRAPHIE [1] GOLDBLATT H. — The renal origin of hypertension. —

Physiol. Rev., 1947, 27, 120-165.

[2] VAN KESTEREN C.A., DANSER A.H., DERCKX F.H., et al. — Mannose 6-phosphate receptormediated internalization and activation of prorenin by cardiac cells.

Hypertension, 1997, 30, 1389-1396.

[3] DE LANNOY L.M., DANSER A.H., VAN KATS J.P., et al . — Renin-angiotensin system components in the interstitial fluid of the isolated perfused rat heart. Local production of angiotensin I.

Hypertension, 1997, 29, 1240-1251.

[4] NGUYEN G., DELARUE F., BURCKLE C., et al. — Pivotal role of the renin/prorenin receptor in angiotensin II production and cellular responses to renin.

J. Clin. Invest., 2002, 109, 1417-1427.

[5] COULET F., GONZALEZ W., BOIXEL C., et al. — Endothelium-independent conversion of angiotensin I by vascular smooth muscle cells.

Cell Tissue Res., 2001, 303, 227-234.

[6] LEVY B.I. — Can angiotensin II type 2 receptors have deleterious effects in cardiovascular disease ? Implications for therapeutic blockade of the renin-angiotensin system. Circulation, 2004, 109, 8-13.

[7] PUEYO M.E., N’DIAYE N., MICHEL J.B. — Angiotensin II-elicited signal transduction via AT1 receptors in endothelial cells. Br. J. Pharmacol., 1996, 118, 7 9-84.

[8] BERK B.C., CORSON M.A. — Angiotensin II signal transduction in vascular smooth muscle :

Role of tyrosine kinases. Circ. Res., 1997, 80, 607-616.

[9] WEIGERT C., BRODBECK K., KLOPFER K., et al. — Angiotensin II induces human TGF-beta 1 promoter activation : Similarity to hyperglycaemia.

Diabetologia, 2002, 45 : 890-898.

[10] GRIENDLING K.K., USHIO-FUKAI M. — Reactive oxygen species as mediators of angiotensin II signaling. Regul. Pept., 2000, 91, 21-27.

[11] PAGANO P.J., CHANOCK S.J., SIWIK D.A., et al. — Angiotensin II induces p67phox mRNA expression and NADPH oxidase superoxide generation in rabbit aortic adventitial fibroblasts.

Hypertension, 1998, 32, 331-337.

[12] KRANZHOFER R., SCHMIDT J., PFEIFFER C.A., et al. — Angiotensin induces inflammatory activation of human vascular smooth muscle cells.

Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 1999, 19, 1623-1629.

[13] BROWN N.J., VAUGHAN D.E. — Prothrombotic effects of angiotensin.

Adv. Intern. Med., 2000, 45, 419-429.

[14] PUEYO M.E., GONZALEZ W., NICOLETTI A., et al. — Angiotensin II stimulates endothelial vascular cell adhesion molecule-1 via nuclear factor-kappaB activation induced by intracellular oxidative stress. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2000, 20, 645-651.

[15] BRILLA C.G., ZHOU G., MATSUBARA L., WEBER K.T. — Collagen metabolism in cultured adult rat cardiac fibroblasts : Response to angiotensin II and aldosterone. J. Mol. Cell. Cardiol., 1994, 26, 809-820.

[16] BROWN N.J., KUMAR S., PAINTER C.A., VAUGHAN D.E. — ACE inhibition versus angiotensin type 1 receptor antagonism : Differential effects on PAI-1 over time. Hypertension, 2002, 40, 859-865.

[17] HENRION D., DOWELL F.J., LEVY B.I., MICHEL J.B.. — In vitro alteration of aortic vascular reactivity in hypertension induced by chronic NG-nitro-L-arginine methyl ester. Hypertension, 1996, 28, 361-366.

[18] PAGANO P.J., CLARK J.K., CIFUENTES-PAGANO M.E., et al. — Localization of a constitutively active, phagocyte-like NADPH oxidase in rabbit aortic adventitia : Enhancement by angiotensin II. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1997, 94, 14483-14488.

[19] LEWIS E.J., HUNSICKER L.G., CLARKE W.R., et al. — Renoprotective effect of the angiotensinreceptor antagonist irbesartan in patients with nephropathy due to type 2 diabetes.

N. Engl. J.

Med., 2001, 345, 851-860.

[20] PARVING H.H., LEHNERT H., BROCHNER-MORTENSEN J., et al. — The effect of irbesartan on the development of diabetic nephropathy in patients with type 2 diabetes.

N. Engl. J. Med., 2001, 345 : 870-878.

[21] MARRE M., JEUNEMAITRE X., GALLOIS Y., et al. — Contribution of genetic polymorphism in the renin-angiotensin system to the development of renal complications in insulin-dependent diabetes : genetique de la nephropathie diabetique (GENEDIAB) study group. J. Clin. Invest., 1997, 99, 1585-1595.

[22] PUEYO M.E., CHALLAH M., GAUGIER D., et al. — TGF-b1 production is correlated with genetically determined angiotensin-converting enzyme expression in congenic rats.

Diabetes, 2004 (sous presse).

[23] YAMADA H., FABRIS B., ALLEN A.M., et al. — Localization of angiotensin converting enzyme in rat heart.

Circ. Res,. 1991, 68, 141-149.

[24] BRIEN K.D., SHAVELLE D.M., CAULFIELD M.T., et al. — Association of angiotensin-converting enzyme with low-density lipoprotein in aortic valvular lesions and in human plasma.

Circulation, 2002, 106, 2224-2230.

[25] JOHNSTON C.I., MOOSER V., SUN Y., FABRIS B. — Changes in cardiac angiotensin converting enzyme after myocardial infarction and hypertrophy in rats. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol., 1991, 18, 107-110.

[26] GAERTNER R., PRUNIER F., PHILIPPE M., et al. — Scar and pulmonary expression and shedding of ACE in rat myocardial infarction.

Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol., 2002, 283, H156- 164.

[27] SUN Y., ZHANG J.Q., ZHANG J., RAMIRES F.J. — Angiotensin II, transforming growth factorbeta1 and repair in the infarcted heart. J. Mol. Cell. Cardiol ., 1998, 30, 1559-1569.

[28] CHALLAH M., VILLARD E., PHILIPPE M., et al. — Angiotensin I-converting enzyme genotype influences arterial response to injury in normotensive rats.

Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 1998, 18, 235-243.

[29] AMANT C., BAUTERS C., BODART J.C., et al. — D allele of the angiotensin I-converting enzyme is a major risk factor for restenosis after coronary stenting.

Circulation, 1997, 96, 56-60.

[30] PARAGH G., SZABO J., KOVACS E., et al. — Altered signal pathway in angiotensin II-stimulated neutrophils of patients with hypercholesterolaemia.

Cell. Signal., 2002, 14, 787-792.

[31] DAUGHERTY A., MANNING M.W., CASSIS L.A. — Angiotensin II promotes atherosclerotic lesions and aneurysms in apolipo protein E-deficient mice. J. Clin. Invest., 2000, 105, 1605- 1612.

[32] WANG Y.X., MARTIN-McNULTY B., FREAY A.D., et al. — Angiotensin II increases urokinasetype plasminogen activator expression and induces aneurysm in the abdominal aorta of apolipoprotein E-deficient mice. Am. J. Pathol., 2001, 159, 1455-1464.

[33] MANNING M.W., CASSI L.A., HUANG J., et al. — Abdominal aortic aneurysms : Fresh insights from a novel animal model of the disease.

Vasc. Med., 2002, 7, 45-54.

[34] DOL F., MARTIN G., STAELS B., et al. — Angiotensin AT1 receptor antagonist irbesartan decreases lesion size, chemokine expression, and macrophage accumulation in apolipoprotein E-deficient mice. J. Cardiovasc. Pharmacol., 2001, 38 : 395-405.

[35] MENARD J., CAMPBELL D.J., AZIZI M., GONZALES M.F.. — Synergistic effects of ACE inhibition and Ang II antagonism on blood pressure, cardiac weight, and renin in spontaneously hypertensive rats. Circulation, 1997, 96, 3072-3078.

DISCUSSION

M. Claude DREUX

Avez-vous étudié des molécules d’intérêt pharmacologique susceptibles d’induire l’ACE dans l’effet de remodelage vasculaire (corrélations TGFB/ACE) ?

Les molécules capables d’induire l’expression de l’ACE sont nombreuses et très diverses, associant des propriétés multiples. Ceci est exemplifié par les corticoïdes qui ont de multiples effets, outre celui d’induire l’expression de l’ACE. De ce fait l’évaluation in vivo d’une telle approche pharmacologique est difficile, d’où l’intérêt de l’approche génétique que nous proposons chez le rat.

Mme Monique ADOLPHE

Vous nous avez dit que la dexaméthasone surexprime l’enzyme de conversion. Quel en est le mécanisme d’action ?

Il s’agit d’un mode d’action transcriptionnel au niveau du promoteur du gène.

M. Jean-Daniel SRAER

L’activation des récepteurs des polymorphonucléaires par l’AT1 a-t-elle un rôle dans l’athérogenèse ?

C’est tout à fait possible. Les polymorphonucléaires en dégranulant, relarguent des protéases telle que l’élastase, capable de provoquer l’érosion de l’endothélium (détachement des cellules endothéliales). L’érosion endothéliale et la margination des polymorphonucléaires sont des composantes importantes du développement de l’athérosclérose.

L’angiotensine II en provoquant la dégranulation des polymorphonucléaires et en activant l’endothélium peut participer de ce phénomène.

M. André VACHERON

Comment expliquez-vous les conséquences délétères des polymorphismes DD de l’enzyme de conversion de l’angiotensine sur les résultats de l’angioplastie coronaire chez l’homme ?

Il s’agit ici de l’expression non-constitutive, non-endothéliale, mais inductible de l’expression de l’ACE par les cellules musculaires lisses en position intimale. Le fait d’avoir un promoteur fort (DD) augmente l’expression de l’enzyme à la surface des cellules musculaires lisses en réponse à l’agression que représente l’angioplastie, favorisant la genèse péricellulaire de l’angiotensine II et la prolifération des cellules musculaires lisses.


* Inserm U460, CHU Xavier Bichat, 75018 Paris. Email : jbmichel@bichat.inserm.fr Tirés-à-part : Professeur Jean-Baptiste MICHEL, à l’adresse ci-dessus. Article reçu le 15 mars 2004 et accepté le 27 avril 2004.

Bull. Acad. Natle Méd., 2004, 188, no 4, 611-620, séance du 27 avril 2004